Preview

Клиническая и экспериментальная тиреоидология

Расширенный поиск

Потенциальные белковые маркеры для дифференциальной диагностики новообразований щитовидной железы

https://doi.org/10.14341/ket12786

Аннотация

Опухоли щитовидной железы (ЩЖ) чрезвычайно распространены. Заболеваемость злокачественными новообразованиями ЩЖ быстро возросла за последние десятилетия, хотя неясно, является ли это истинным увеличением или результатом широкого использования скринингового ультразвукового исследования. Стандартизированной диагностической манипуляцией, определяющей риск злокачественного потенциала и показания для оперативного лечения образований ЩЖ, является тонкоигольная аспирационная биопсия (ТАБ) с последующим цитологическим исследованием клеточного аспирата. Несмотря на то, что в превалирующем проценте случаев удается провести дифференциальную диагностику между раком щитовидной железы (РЩЖ) и доброкачественным образованиями ЩЖ, существует проблема диагностики при промежуточных категориях цитологических заключений по Bethesda, что обусловливает необходимость поиска альтернативных решений. Это определяет потребность в расширении предоперационных диагностических возможностях. Одним из ключевых направлений работы по ее реализации является изучение протеомных данных при различных патологиях ЩЖ. Изучение протеома опухолей ЩЖ открывает возможность выявления специфических белковых маркеров или механизмов, которые играют ключевую роль в онкогенезе, метастазировании опухолей ЩЖ, а также определения потенциальных мишеней для новых методов диагностики и лечения этих заболеваний. Все вышеизложенное определяет актуальность и практическую значимость изучения патологии ЩЖ на молекулярном уровне, рассмотрения потенциала белков как маркеров.

Об авторах

Т. Н. Аксенова
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии
Россия

Аксенова Татьяна Николаевна - врач-эндокринолог, аспирант.

117292, Москва, ул. Дм. Ульянова, д. 11


Конфликт интересов:

Нет



Е. В. Бондаренко
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии
Россия

Бондаренко Екатерина Владимировна - к.м.н., руководитель Центра биобанкирования.

Москва


Конфликт интересов:

Нет



В. А. Иоутси
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии
Россия

Иоутси Виталий Алексеевич - к.х.н., заведующий лабораторией метаболомных и протеомных исследований.

Москва


Конфликт интересов:

Нет



Ф. М. Абдулхабирова
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии
Россия

Абдулхабирова Фатима Магомедовна - к.м.н., заведующая лабораторией цитологии и цитогенетики отдела фундаментальной патоморфологии.

Москва


Конфликт интересов:

Нет



В. Э. Ванушко
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии
Россия

Ванушко Владимир Эдуардович - д.м.н., заведующий хирургическим отделением №2.

Москва


Конфликт интересов:

Нет



П. В. Белоусов
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии
Россия

Белоусов Павел Владимирович - старший научный сотрудник лаборатории онкоэндокринологии.

Москва


Конфликт интересов:

Нет



А. В. Дзодзаева
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии
Россия

Дзодзаева Ария Валерьевна - врач-эндокринолог.

Москва


Конфликт интересов:

Нет



Н. А. Кициловская
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии
Россия

Кициловская Наталья Алексеевна.

Москва


Конфликт интересов:

Нет



Н. Г. Мокрышева
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии
Россия

Мокрышева Наталья Георгиевна - д.м.н., профессор, член-корреспондент Российской академии наук.

Москва


Конфликт интересов:

Нет



Список литературы

1. Siegel RL, Miller KD, Wagle NS, Jemal A. Cancer statistics, 2023. CA Cancer J Clin. 2023;73(1):17-48. doi: https://doi.org/10.3322/caac.21763

2. Pizzato M, Li M, Vignat J, et al. The epidemiological landscape of thyroid cancer worldwide: GLOBOCAN estimates for incidence and mortality rates in 2020. Lancet Diabetes Endocrinol. 2022;10(4):264-272. doi: https://doi.org/10.1016/S2213-8587(22)00035-3

3. Li M, Maso LD, Vaccarella S. Global trends in thyroid cancer incidence and the impact of overdiagnosis. Lancet Diabetes Endocrinol. 2020;8(6):468-470. doi: https://doi.org/10.1016/S2213-8587(20)30115-7

4. Kim J, Gosnell JE, Roman SA. Geographic influences in the global rise of thyroid cancer. Nat Rev Endocrinol. 2020;16(1):17-29. doi: https://doi.org/10.1038/s41574-019-0263-x

5. Uppal N, Collins R, James B. Thyroid nodules: Global, economic, and personal burdens. Front Endocrinol (Lausanne). 2023;14. doi: https://doi.org/10.3389/fendo.2023.1113977

6. Alexander EK, Cibas ES. Diagnosis of thyroid nodules. Lancet Diabetes Endocrinol. 2022;10(7):533-539. doi: https://doi.org/10.1016/S2213-8587(22)00101-2

7. Horvath E, Majlis S, Rossi R, et al. An ultrasonogram reporting system for thyroid nodules stratifying cancer risk for clinical management. J Clin Endocrinol Metab. 2009. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2008-1724

8. Russ G, Bonnema SJ, Erdogan MF, Durante C, Ngu R, Leenhardt L. European Thyroid Association Guidelines for Ultrasound Malignancy Risk Stratification of Thyroid Nodules in Adults: The EU-TIRADS. Eur Thyroid J. 2017;6(5):225-237. doi: https://doi.org/10.1159/000478927

9. Trimboli P, Ngu R, Royer B, et al. A multicentre validation study for the EU‐TIRADS using histological diagnosis as a gold standard. Clin Endocrinol (Oxf). 2019;91(2):340-347. doi: https://doi.org/10.1111/cen.13997

10. Ali SZ, Baloch ZW, Cochand-Priollet B, Schmitt FC, Vielh P, VanderLaan PA. The 2023 Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopathology. Thyroid®. July 2023. doi: https://doi.org/10.1089/thy.2023.0141

11. Medina Chamorro FM, Calle JA, Stein JE, Merchancano L, Mendoza Briñez AM, Pulido Wilches AA. Experience of the Implementation of Rapid On-Site Evaluation in Ultrasound-Guided Fine-Needle Aspiration Biopsy of Thyroid Nodules. Curr Probl Diagn Radiol. 2018;47(4):220-224. doi: https://doi.org/10.1067/j.cpradiol.2017.06.009

12. Haugen BR, Alexander EK, Bible KC, et al. 2015 American Thyroid Association Management Guidelines for Adult Patients with Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer: The American Thyroid Association Guidelines Task Force on Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer. Thyroid. 2016;26(1):1-133. doi: https://doi.org/10.1089/thy.2015.0020

13. Yaprak Bayrak B, Eruyar AT. Malignancy rates for Bethesda III and IV thyroid nodules: a retrospective study of the correlation between fine-needle aspiration cytology and histopathology. BMC Endocr Disord. 2020;20(1):48. doi: https://doi.org/10.1186/s12902-020-0530-9

14. Ban Y, Yamamoto G, Takada M, et al. Proteomic Profiling of Thyroid Papillary Carcinoma. J Thyroid Res. 2012;2012:1-7. doi: https://doi.org/10.1155/2012/815079

15. Wei X, Zhang Y, Yu S, et al. PDLIM5 identified by label-free quantitative proteomics as a potential novel biomarker of papillary thyroid carcinoma. Biochem Biophys Res Commun. 2018;499(2):338-344. doi: https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2018.03.159

16. Farrokhi Yekta R, Arefi Oskouie A, Rezaei Tavirani M, Mohajeri-Tehrani MR, Soroush AR. Decreased apolipoprotein A4 and increased complement component 3 as potential markers for papillary thyroid carcinoma: A proteomic study. Int J Biol Markers. 2018;33(4):455-462. doi: https://doi.org/10.1177/1724600818787752

17. Sofiadis A, Becker S, Hellman U, et al. Proteomic profiling of follicular and papillary thyroid tumors. Eur J Endocrinol. 2012;166(4):657-667. doi: https://doi.org/10.1530/EJE-11-0856

18. Wen J, Qin X, Zhang J, et al. Clinical significance of matrix metalloproteinase-9 expression in papillary thyroid carcinoma: a meta-analysis. World J Surg Oncol. 2023. doi: https://doi.org/10.1186/s12957-023-03101-x

19. Guan H, Guo Y, Liu L, et al. INAVA promotes aggressiveness of papillary thyroid cancer by upregulating MMP9 expression. Cell Biosci. 2018;8(1):26. doi: https://doi.org/10.1186/s13578-018-0224-4

20. Marečko I, Cvejić D, Šelemetjev S, et al. Enhanced activation of matrix metalloproteinase-9 correlates with the degree of papillary thyroid carcinoma infiltration. Croat Med J. 2014. doi: https://doi.org/10.3325/cmj.2014.55.128

21. Shi Y, Su C, Hu H, et al. Serum MMP-2 as a potential predictive marker for papillary thyroid carcinoma. Ahmad A, ed. PLoS One. 2018;13(6):e0198896. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0198896

22. Ali KM, Awny S, Ibrahim DA, et al. Role of P53, E-cadherin and BRAF as predictors of regional nodal recurrence for papillary thyroid cancer. Ann Diagn Pathol. 2019. doi: https://doi.org/10.1016/j.anndiagpath.2019.04.005

23. Zhu X, Bai Q, Lu Y, et al. Expression and function of CXCL12/CXCR4/CXCR7 in thyroid cancer. Int J Oncol. 2016. doi: https://doi.org/10.3892/ijo.2016.3485

24. Werner TA, Forster CM, Dizdar L, et al. CXCR4/CXCR7/CXCL12-Axis in follicular thyroid carcinoma. J Cancer. 2018. doi: https://doi.org/10.7150/jca.23042

25. Zhang W, Song B, Yang T. MMP-2, MMP-9, TIMP-1, and TIMP-2 in the Peripheral Blood of Patients with Differentiated Thyroid Carcinoma. Cancer Manag Res. 2019;Volume 11:10675-10681. doi: https://doi.org/10.2147/CMAR.S233776

26. Bumber B, Marjanovic Kavanagh M, Jakovcevic A, Sincic N, Prstacic R, Prgomet D. Role of matrix metalloproteinases and their inhibitors in the development of cervical metastases in papillary thyroid cancer. Clin Otolaryngol. 2020;45(1):55-62. doi: https://doi.org/10.1111/coa.13466

27. Cho H, Kim J, Oh YL. Diagnostic value of HBME‐1, CK19, Galectin 3, and CD56 in the subtypes of follicular variant of papillary thyroid carcinoma. Pathol Int. 2018;68(11):605-613. doi: https://doi.org/10.1111/pin.12729

28. Xin Y, Guan D, Meng K, Lv Z, Chen B. Diagnostic accuracy of CK-19, Galectin-3 and HBME-1 on papillary thyroid carcinoma: A meta-analysis. Int J Clin Exp Pathol. 2017. Available: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6965469/

29. Arcolia V, Journe F, Renaud F, et al. Combination of galectin-3, CK19 and HBME-1 immunostaining improves the diagnosis of thyroid cancer. Oncol Lett. 2017. doi: https://doi.org/10.3892/ol.2017.6719

30. Palo S, Biligi DS. Differential diagnostic significance of HBME-1, CK19 and S100 in various thyroid lesions. Malays J Pathol. 2017.

31. Muthusamy S, Azhar Shah S, Abdullah Suhaimi SN, et al. CD56 expression in benign and malignant thyroid lesions. Malays J Pathol. 2018.

32. Erdogan-Durmus S, Ozcan D, Yarikkaya E, Kurt A, Arslan A. CD56, HBME-1 and cytokeratin 19 expressions in papillary thyroid carcinoma and nodular thyroid lesions. J Res Med Sci. 2016. doi: https://doi.org/10.4103/1735-1995.183986

33. Bartolazzi A, Sciacchitano S, D’Alessandria C. Galectin-3: The Impact on the Clinical Management of Patients with Thyroid Nodules and Future Perspectives. Int J Mol Sci. 2018;19(2):445. doi: https://doi.org/10.3390/ijms19020445

34. Li J, Vasilyeva E, Wiseman SM. Beyond immunohistochemistry and immunocytochemistry: a current perspective on galectin-3 and thyroid cancer. Expert Rev Anticancer Ther. 2019;19(12):1017-1027. doi: https://doi.org/10.1080/14737140.2019.1693270

35. Wang C-A, Tsai S-J. The non-canonical role of vascular endothelial growth factor-C axis in cancer progression. Exp Biol Med. 2015;240(6):718-724. doi: https://doi.org/10.1177/1535370215583802

36. Šelemetjev S, Đorić I, Paunović I, Tatić S, Cvejić D. Coexpressed High Levels of VEGF-C and Active MMP-9 Are Associated With Lymphatic Spreading and Local Invasiveness of Papillary Thyroid Carcinoma. Am J Clin Pathol. 2016;146(5):594-602. doi: https://doi.org/10.1093/ajcp/aqw184

37. Jang JY, Kim DS, Park HY, et al. Preoperative serum VEGF-C but not VEGF-A level is correlated with lateral neck metastasis in papillary thyroid carcinoma. Head Neck. 2019. doi: https://doi.org/10.1002/hed.25729

38. Jia ZY, Wu XL, Zhang YH, Ma BL, Ma FC. The correlation between ultrasonographic features, bFGF, and the local invasiveness of thyroid papillary carcinoma. Med (United States). 2020. doi: https://doi.org/10.1097/MD.0000000000020644

39. Kitahara CM, Schneider AB. Epidemiology of Thyroid Cancer. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2022;31(7):1284-1297. doi: https://doi.org/10.1158/1055-9965.EPI-21-1440

40. Abdullah MI, Lee CC, Mat Junit S, Ng KL, Hashim OH. Tissue and serum samples of patients with papillary thyroid cancer with and without benign background demonstrate different altered expression of proteins. PeerJ. 2016;4:e2450. doi: https://doi.org/10.7717/peerj.2450

41. Wei W, Wu Y, Chen DD, et al. Proteomics profiling for the global and acetylated proteins of papillary thyroid cancers. Proteome Sci. 2023. doi: https://doi.org/10.1186/s12953-023-00207-8

42. Cheng S, Lee J, Chang Y, Lin C, Li Y, Liu C. Overexpression of chitinase‐3‐like protein 1 is associated with structural recurrence in patients with differentiated thyroid cancer. J Pathol. 2020;252(2):114-124. doi: https://doi.org/10.1002/path.5503

43. Sponziello M, Rosignolo F, Celano M, et al. Fibronectin-1 expression is increased in aggressive thyroid cancer and favors the migration and invasion of cancer cells. Mol Cell Endocrinol. 2016;431:123-132. doi: https://doi.org/10.1016/j.mce.2016.05.007

44. Kang YE, Kim JM, Lim MA, et al. Growth Differentiation Factor 15 is a Cancer Cell-Induced Mitokine That Primes Thyroid Cancer Cells for Invasiveness. Thyroid. 2021. doi: https://doi.org/10.1089/thy.2020.0034

45. Stępień T, Brożyna M, Kuzdak K, et al. Elevated Concentrations of SERPINE2/Protease Nexin-1 and Secretory Leukocyte Protease Inhibitor in the Serum of Patients with Papillary Thyroid Cancer. Dis Markers. 2017;2017:1-5. doi: https://doi.org/10.1155/2017/4962137

46. Zhang W, Song B, Yang T. MMP-2, MMP-9, TIMP-1, and TIMP-2 in the Peripheral Blood of Patients with Differentiated Thyroid Carcinoma. Cancer Manag Res. 2019;Volume 11:10675-10681. doi: https://doi.org/10.2147/CMAR.S233776

47. Ye G, Zhang X, Li M, et al. Integrated analysis of circulating and tissue proteomes reveals that fibronectin 1 is a potential biomarker in papillary thyroid cancer. BMC Cancer. 2023;23(1):412. doi: https://doi.org/10.1186/s12885-023-10839-w

48. Lu ZL, Chen YJ, Jing XY, Wang NN, Zhang T, Hu CJ. Detection and identification of serum peptides biomarker in papillary thyroid cancer. Med Sci Monit. 2018. doi: https://doi.org/10.12659/MSM.907768

49. Li D, Wu J, Liu Z, Qiu L, Zhang Y. Novel circulating protein biomarkers for thyroid cancer determined through data-independent acquisition mass spectrometry. PeerJ. 2020;8:e9507. doi: https://doi.org/10.7717/peerj.9507

50. Hannan JP, Laskowski J, Thurman JM, Hageman GS, Holers VM. Mapping the Complement Factor H-Related Protein 1 (CFHR1):C3b/C3d Interactions. Rooijakkers SH, ed. PLoS One. 2016;11(11):e0166200. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0166200

51. Farrokhi Yekta R, Arefi Oskouie A, Rezaei Tavirani M, Mohajeri-Tehrani MR, Soroush AR. Decreased apolipoprotein A4 and increased complement component 3 as potential markers for papillary thyroid carcinoma: A proteomic study. Int J Biol Markers. 2018;33(4):455-462. doi: https://doi.org/10.1177/1724600818787752

52. Hu Z, Zhao P, Zhang K, Zang L, Liao H, Ma W. Evaluation of Serum Vascular Adhesion Protein-1 as a Potential Biomarker in Thyroid Cancer. Int J Endocrinol. 2016;2016:1-7. doi: https://doi.org/10.1155/2016/6312529

53. Baki A, Tosun İ, Yıldız M. Can VAP-1 Protein be used as a Biomarker in Thyroid Cancer? İstanbul Med J. 2019;20(6):535-540. doi: https://doi.org/10.4274/imj.galenos.2019.26817

54. Colombo M, Raposo G, Théry C. Biogenesis, Secretion, and Intercellular Interactions of Exosomes and Other Extracellular Vesicles. Annu Rev Cell Dev Biol. 2014;30(1):255-289. doi: https://doi.org/10.1146/annurev-cellbio-101512-122326

55. Luo D, Zhan S, Xia W, Huang L, Ge W, Wang T. Proteomics study of serum exosomes from papillary thyroid cancer patients. Endocr Relat Cancer. 2018;25(10):879-891. doi: https://doi.org/10.1530/ERC-17-0547

56. Henderson YC, Toro–Serra R, Chen Y, et al. Src inhibitors in suppression of papillary thyroid carcinoma growth. Head Neck. 2014;36(3):375-384. doi: https://doi.org/10.1002/hed.23316

57. Lai X, Umbricht CB, Fisher K, Bishop J, Shi Q, Chen S. Identification of novel biomarker and therapeutic target candidates for diagnosis and treatment of follicular carcinoma. J Proteomics. 2017. doi: https://doi.org/10.1016/j.jprot.2017.07.003

58. Huang D, Zhang H, Li L, et al. Proteotypic Differences of Follicular-Patterned Thyroid Neoplasms. Front Endocrinol (Lausanne). 2022. doi: https://doi.org/10.3389/fendo.2022.854611

59. Ucal Y, Tokat F, Duren M, Ince U, Ozpinar A. Peptide Profile Differences of Noninvasive Follicular Thyroid Neoplasm with Papillary-Like Nuclear Features, Encapsulated Follicular Variant, and Classical Papillary Thyroid Carcinoma: An Application of Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Mass Spectrometry Imaging. Thyroid. 2019. doi: https://doi.org/10.1089/thy.2018.0392

60. Belousov P V., Bogolyubova A V., Kim YS, et al. Serum immunoproteomics combined with pathological reassessment of surgical specimens identifies TCP-1ζ autoantibody as a potential biomarker in thyroid neoplasia. J Clin Endocrinol Metab. 2015. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2014-4260

61. Zhu QL, Wang TF, Cao QIF, Zheng MH, Lu AG. Inhibition of cytosolic chaperonin CCTζ-1 expression depletes proliferation of colorectal carcinoma in vitro. J Surg Oncol. 2010. doi: https://doi.org/10.1002/jso.21625

62. Lanshchakov K V, Belousov P V, Vanushko VE, Abrosimov AY, Kuprash D V, Kuznetsov NS. Autoantibody profiling of benign and malignant thyroid tumors and design of a prototype diagnostic array. Endocr Surg. 2012;(2):15. doi: https://doi.org/10.14341/2306-3513-2012-2-15-20

63. Lu H, Pan Y, Ruan Y, et al. Biomarker Discovery for Early Diagnosis of Papillary Thyroid Carcinoma Using High-Throughput Enhanced Quantitative Plasma Proteomics. J Proteome Res. 2023. doi: https://doi.org/10.1021/acs.jproteome.3c00187

64. Sofiadis A, Dinets A, Orre LM, et al. Proteomic Study of Thyroid Tumors Reveals Frequent Up-Regulation of the Ca 2+ -Binding Protein S100A6 in Papillary Thyroid Carcinoma. Thyroid. 2010;20(10):1067-1076. doi: https://doi.org/10.1089/thy.2009.0400

65. Li D, Wu J, Liu Z, Qiu L, Zhang Y. Novel circulating protein biomarkers for thyroid cancer determined through data-independent acquisition mass spectrometry. PeerJ. 2020;8:e9507. doi: https://doi.org/10.7717/peerj.9507

66. Shirazkeytabar K, Razavi SA, Abooshahab R, et al. Elevated Plasma Levels of MT4-MMP and MT6-MMP; A New Observation in Patients with Thyroid Nodules. Arch Iran Med. 2023;26(6):338-345. doi: https://doi.org/10.34172/aim.2023.51

67. Sun Z, Feng D, Jiang L, Tian J, Wang J, Zhu W. Integrated proteomic and metabolomic analysis of plasma reveals regulatory pathways and key elements in thyroid cancer. Mol Omi. 2023. doi: https://doi.org/10.1039/d3mo00142c

68. Brown LM, Helmke SM, Hunsucker SW, et al. Quantitative and qualitative differences in protein expression between papillary thyroid carcinoma and normal thyroid tissue. Mol Carcinog. 2006;45(8):613-626. doi: https://doi.org/10.1002/mc.20193

69. Abdullah MI, Lee CC, Mat Junit S, Ng KL, Hashim OH. Tissue and serum samples of patients with papillary thyroid cancer with and without benign background demonstrate different altered expression of proteins. PeerJ. 2016;4:e2450. doi: https://doi.org/10.7717/peerj.2450

70. Martínez-Aguilar J, Clifton-Bligh R, Molloy MP. Proteomics of thyroid tumours provides new insights into their molecular composition and changes associated with malignancy. Sci Rep. 2016. doi: https://doi.org/10.1038/srep23660

71. Detection of cathepsin B up‐regulation in neoplastic thyroid tissues by proteomic analysis — Srisomsap — 2002 — PROTEOMICS — Wiley Online Library. Accessed: 2024. [Online]. Available: https://analyticalsciencejournals.onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1002/1615-9861(200206)2:6%3C706::AID-PROT706%3E3.0.CO;2-E

72. Sofiadis A, Becker S, Hellman U, et al. Proteomic profiling of follicular and papillary thyroid tumors. Eur J Endocrinol. 2012;166(4):657-667. doi: https://doi.org/10.1530/EJE-11-0856

73. Ucal Y, Tokat F, Duren M, Ince U, Ozpinar A. Peptide Profile Differences of Noninvasive Follicular Thyroid Neoplasm with Papillary-Like Nuclear Features, Encapsulated Follicular Variant, and Classical Papillary Thyroid Carcinoma: An Application of Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Mass Spe. Thyroid. 2019;29(8):1125-1137. doi: https://doi.org/10.1089/thy.2018.0392

74. Ucal Y, Eravci M, Tokat F, Duren M, Ince U, Ozpinar A. Proteomic analysis reveals differential protein expression in variants of papillary thyroid carcinoma. EuPA Open Proteomics. 2017;17:1-6. doi: https://doi.org/10.1016/j.euprot.2017.09.001

75. Luo D, Zhan S, Xia W, Huang L, Ge W, Wang T. Proteomics study of serum exosomes from papillary thyroid cancer patients. Endocr Relat Cancer. 2018;25(10):879-891. doi: https://doi.org/10.1530/ERC-17-0547

76. Трошина Е.А., Юшков П.В., Абесадзе И.А., Орджоникидзе М.К. Клинические, морфологические и иммуногистохимические особенности фолликулярных опухолей щитовидной железы результаты ретроспективного исследования // II научная конференция Клиническая 30 морфология новообразований эндокринных желез. Москва. — 2007. — С. 153.


Рецензия

Для цитирования:


Аксенова Т.Н., Бондаренко Е.В., Иоутси В.А., Абдулхабирова Ф.М., Ванушко В.Э., Белоусов П.В., Дзодзаева А.В., Кициловская Н.А., Мокрышева Н.Г. Потенциальные белковые маркеры для дифференциальной диагностики новообразований щитовидной железы. Клиническая и экспериментальная тиреоидология. 2024;20(1):56-67. https://doi.org/10.14341/ket12786

For citation:


Aksenova T.N., Bondarenko E.V., Ioutsi V.A., Abdulkhabirova F.M., Vanushko V.E., Belousov P.V., Dzodzaeva A.V., Kitsilovskaya N.A., Mokrysheva N.G. Potential protein markers for differential diagnosis of thyroid neoplasms. Clinical and experimental thyroidology. 2024;20(1):56-67. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/ket12786

Просмотров: 445


ISSN 1995-5472 (Print)
ISSN 2310-3787 (Online)